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Cell DIVE | 解鎖單細(xì)胞空間蛋白組學(xué)分析技能

更新時間:2021-07-21      點擊次數(shù):1377


前言

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在當(dāng)今這個科研節(jié)奏飛快的時代,想要把科學(xué)論點高調(diào)地發(fā)表在頂級期刊上往往需要運用多種技術(shù)采集“立體而豐滿"的結(jié)果作為論據(jù)支持。以組織樣本為例,要實現(xiàn)單細(xì)胞分析,我們很容易會想到流式細(xì)胞術(shù)(Flow cytometry)。在此基礎(chǔ)上進(jìn)行空間定位分析,免疫組化(Immunohistochemistry)的優(yōu)勢則非常明顯。而說到蛋白組學(xué)分析,質(zhì)譜分析法(Mass spectrometry)無疑是最“接地氣"的手段。喜愛高效率的我們不禁會問:“有沒有一個技術(shù)能綜合單細(xì)胞、空間定位和蛋白組學(xué)分析的優(yōu)點呢?" 這時,徠卡人會自豪地告訴你:“Cell DIVETM了解一下~" 接下來,讓我們結(jié)合實際應(yīng)用,看看Cell DIVETM在單細(xì)胞、空間定位和蛋白組學(xué)分析方面的優(yōu)勢。
 

小鼠腸道簇狀細(xì)胞單細(xì)胞分析

通過成像手段實現(xiàn)單細(xì)胞分析的最大難點在于如何實現(xiàn)單一樣本的多色標(biāo)記。傳統(tǒng)熒光免疫組化技術(shù)受到熒光染料光學(xué)特征的限制,難以完成一個樣本內(nèi)超過7種生物標(biāo)志分子的成像任務(wù)。Cell DIVETM技術(shù)通過多輪染色的手段克服了該難題,可以在一個樣本內(nèi)實現(xiàn)多于60種生物標(biāo)志物的成像檢測。配合病理分析軟件,可以輕松地完成每個細(xì)胞內(nèi)各種生物標(biāo)志分子的半定量分析。

 

下面這篇文章就是我們美國范德比爾特大學(xué)醫(yī)學(xué)中心(Vanderbilt University Medical Center)的客戶用Cell DIVETM完成的小鼠小腸簇狀細(xì)胞(Tuft cells)14種生物標(biāo)志物的成像和異質(zhì)性分析[1]。簇狀細(xì)胞,也叫做多吞飲小管細(xì)胞 (Caveolated cells),是一種分布于胃腸道的罕見細(xì)胞類型,約占所有腸上皮細(xì)胞的0.4%,其頂端呈現(xiàn)密集的微絲結(jié)構(gòu),并在化學(xué)傳感(Chemosensing)中發(fā)揮作用。

 

作者通過功能性蛋白檢測不僅發(fā)現(xiàn)了小腸簇狀細(xì)胞的數(shù)量、組成和功能受飲食和腸道菌群調(diào)控的規(guī)律,還發(fā)現(xiàn)了Hopx和p-EGFR高表達(dá)的兩個新簇狀細(xì)胞亞群,為腸道簇狀細(xì)胞的進(jìn)一步研究提供了基礎(chǔ)框架。在本研究中,Cell DIVETM發(fā)揮了強大的單細(xì)胞分析能力,幫助作者完成簇狀細(xì)胞的精確定位和功能性分子表達(dá)量分析(圖2)。


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圖2 小鼠簇狀細(xì)胞(Tuft cells)超多標(biāo)成像-分析圖 [1] 

(1A)細(xì)胞圈選分割示意圖,(2A & B)細(xì)胞群體t-SNE分析及簇狀細(xì)胞異質(zhì)性分析,(3)簇狀細(xì)胞功能性分子熒光成像圖。

 

 

腫瘤-免疫細(xì)胞空間定位分析

分子空間定位信息的呈現(xiàn)是顯微成像技術(shù)的傳統(tǒng)優(yōu)勢,但難以對成像數(shù)據(jù)進(jìn)行深度信息挖掘,導(dǎo)致圖像往往只能作為文章結(jié)論的“助攻"型結(jié)果。作為一套整體解決方案,Cell DIVETM結(jié)合了當(dāng)今定量病理分析行業(yè)的金標(biāo)準(zhǔn)——HALO軟件(圖3),使圖像深層信息的呈現(xiàn)不再遙不可及。單細(xì)胞生物標(biāo)志物定量、組織區(qū)域AI智能識別、細(xì)胞密度/浸潤/距離分析等HALO最擅長的分析方式能輕松解碼超多標(biāo)圖像的隱藏信息。


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圖3 HALO定量病理分析示意圖

接下來,我們通過一篇由美國梅奧診所(Mayo Clinic)的客戶發(fā)表的惡性黑色素瘤微環(huán)境研究的文章來看看Cell DIVETM強大的空間定位分析能力[2]。腫瘤微環(huán)境中腫瘤細(xì)胞和免疫細(xì)胞的相互作用關(guān)系對研究腫瘤免疫應(yīng)答具有重要意義。

 

作者用Cell DIVETM技術(shù)對173例III期惡性黑色素瘤病人臨床樣本中21種生物標(biāo)志分子進(jìn)行成像(圖4),進(jìn)而通過分析多個免疫細(xì)胞亞群的浸潤特征,找到?jīng)Q定異質(zhì)性腫瘤微環(huán)境中淋巴細(xì)胞浸潤的關(guān)鍵因素——高表達(dá)HLA-1的腫瘤細(xì)胞。在本研究中,Cell DIVETM展現(xiàn)了優(yōu)秀的批量數(shù)據(jù)處理和空間定位分析能力,幫助作者完成不同HLA表達(dá)水平的腫瘤細(xì)胞與淋巴細(xì)胞的精準(zhǔn)定位分析(圖4-6A)。


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圖4 黑色素腫瘤微環(huán)境中免疫細(xì)胞空間定位分析圖 [2] 

(1B)腫瘤病人淋巴結(jié)分區(qū)視野選擇示意圖,熱圖顯示所選視野標(biāo)記分子表達(dá)差異,(3A & B)腫瘤微環(huán)境中淋巴細(xì)胞浸潤密度分析,(6A)免疫細(xì)胞空間定位分析。

 

 

結(jié)腸癌MAPK信號通路蛋白組學(xué)分析

技術(shù)研發(fā)初期,Cell DIVETM之所以選擇多輪抗體標(biāo)記路線的原因之一是為了突破單一樣品中檢測生物標(biāo)志分子的數(shù)量限制。作為一種理論上沒有標(biāo)記上限的實驗手段,多輪抗體標(biāo)記法可以更好地滿足后續(xù)蛋白組學(xué)分析在標(biāo)志分子數(shù)量上的需求。

 

為了更高效地進(jìn)行實驗設(shè)計,Cell DIVETM研發(fā)團(tuán)隊在技術(shù)研發(fā)的同時,進(jìn)行了抗體庫的建立。目前,已經(jīng)完成了350余種特異性抗體的Cell DIVETM技術(shù)兼容性測試。不僅如此,我們還根據(jù)多個領(lǐng)域內(nèi)著名的生信數(shù)據(jù)庫(如KEGG PATHWAY等)將抗體按照不同研究方向進(jìn)行歸類。用戶可以在抗體庫內(nèi)根據(jù)自己感興趣的研究方向查找關(guān)鍵蛋白,極大地提高了實驗設(shè)計環(huán)節(jié)中抗體選擇的效率(圖5)。


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圖5 腫瘤研究Cell DIVETM已驗證抗體數(shù)(部分)

Cell DIVETM研發(fā)時期的一篇文章向我們展現(xiàn)了上述的抗體資源庫在腫瘤病理分型方面具有優(yōu)勢[3]。為了優(yōu)化結(jié)直腸癌病理分型系統(tǒng),作者利用抗體資源中的一系列生物標(biāo)志物對747例I至III期結(jié)直腸癌樣本進(jìn)行了Cell DIVETM單細(xì)胞空間蛋白組學(xué)分析。針對不同生理事件和關(guān)注的信號通路,作者選取了細(xì)胞應(yīng)激、細(xì)胞外基質(zhì)、調(diào)節(jié)蛋白和激酶等61種生物標(biāo)志分子。

 

通過蛋白組學(xué)分析,作者發(fā)現(xiàn)mTORC1通路上游蛋白RPS6、4E-BP1和ERK1/2的磷酸化程度有望作為判斷結(jié)直腸癌病人雷帕霉素耐藥的關(guān)鍵指標(biāo)(圖6)。這里不得不表揚一下Cell DIVETM抗體測試團(tuán)隊,完成了大量的抗體驗證工作,幫助Cell DIVETM用戶在實驗設(shè)計環(huán)節(jié)節(jié)約了不少抗體信息檢索的時間。


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圖6 結(jié)直腸癌Cell DIVETM檢測和蛋白組學(xué)分析 [3] 

 

 

結(jié)語

 

作為一套整體解決方案,Cell DIVETM涵蓋了從實驗設(shè)計到圖像采集再到結(jié)果分析的全套標(biāo)準(zhǔn)化操作流程、優(yōu)秀的成像設(shè)備和強大的數(shù)據(jù)解析系統(tǒng),幫助用戶輕松實現(xiàn)超多標(biāo)(>10種標(biāo)記分子)成像,解鎖單細(xì)胞空間蛋白組學(xué)分析技能。

 


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圖7 Cell DIVETM 超多標(biāo)組織成像分析整體解決方案

 

參考文獻(xiàn):

[1] Eliot McKinley, et al. Optimized multiplex immunofluorescence single-cell analysis reveals tuft cell heterogeneity. JCI Insight. 2017, 2(11): e93487

[2] Yan Yiyi, et al. Understanding heterogeneous tumor microenvironment in metastatic melanoma. PLoS ONE. 2019, 14(6): e0216485

[3] Gerdes MJ, et al. Highly multiplexed single-cell analysis of formalin-fixed, paraffin-embedded cancer tissue. PNAS, 2013, 110(29): 11982–11987

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